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流式細(xì)胞術(shù)常見問(wèn)題集錦
  • 發(fā)布日期:2018-05-30      瀏覽次數(shù):2396
    • 1、流式細(xì)胞儀上的FL2-W FL2-A FL2-H 分別是做什么的?

      FL2-W是只檢測(cè)熒光的脈沖寬度, FL2-H是指脈沖高度。通常在做細(xì)胞周期分析時(shí)應(yīng)用,用于去除粘連細(xì)胞。

      2、流式同型對(duì)照怎樣選擇?

      同型對(duì)照(Isotype Control):使用與一抗相同種屬來(lái)源、相同亞型、相同劑量和相同的免疫球蛋白及亞型的免疫球蛋白,用于消除由于抗體非特異性結(jié)合到細(xì)胞表面而產(chǎn)生的背景染色。如果一抗是多抗,可以用an normal serum(與一抗相同的正常血清) (must be the same species as primary antibody)。This control is easy to achieve and can be used routinely in immunohistochemical staining.這個(gè)可以咨詢?cè)噭┥獭M蛯?duì)照為免疫熒光標(biāo)記中的陰性對(duì)照。由于熒光標(biāo)記單抗的組來(lái)源不同,應(yīng)選用相同來(lái)源的未標(biāo)記單抗作為同型對(duì)照來(lái)調(diào)整背景染色。舉個(gè)例子:比如檢測(cè)一抗為單抗的mouse anti rat CD11b,clone OX-42 purified IgG,那么它的isotype 是mouse IgG2a, 所以可以用purified(純化的) mouse IgG2a來(lái)做OX-42的同型對(duì)照(Isotype Control)。一般的的生物技術(shù)公司和國(guó)內(nèi)的代理都有出售。

      同型對(duì)照:是指與MoAb相同的、未免疫小鼠的免疫球蛋白亞類,若使用直接免疫熒光染色法,同型對(duì)照也應(yīng)標(biāo)記熒光色素,如IgG1 FITC、IgG2a、PE等。主要考慮了細(xì)胞的自發(fā)熒光、FC受體介導(dǎo)的抗體結(jié)合和非特異性抗體結(jié)合等影響因素。此外,同型對(duì)照與MoAb所標(biāo)記的熒光色素、濃度、F:P比值(標(biāo)記的熒光色素與免疫球蛋白分子的比值)應(yīng)該相同,這對(duì)準(zhǔn)確設(shè)定陰性與陽(yáng)性細(xì)胞的界標(biāo)有重要意義,切忌使用與MoAb不相匹配的同型對(duì)照,為同一實(shí)驗(yàn)室、采用相同工藝或方法制備(如同一品牌)的產(chǎn)品。

      3、流式細(xì)胞技術(shù)測(cè)定細(xì)胞內(nèi)游離鈣濃度為何要使用氯化鈣?

      在文獻(xiàn)及其他專業(yè)中都有測(cè)定游離鈣的方法,具體如下:

      (1) 鈣熒光探針負(fù)載;

      (2)隨機(jī)測(cè)定每管細(xì)胞懸液樣品(以下簡(jiǎn)稱樣品)的單個(gè)細(xì)胞的熒光強(qiáng)度,記為F值。

      (3)加入10%Triton X 100,(破膜用);加入1 mmol/L氯化鈣,(問(wèn)題所在),吹打均勻,孵育1~10min,測(cè)定熒光即Fmax值。

      (4)加入EGTA,20%26mu;l(鈣螯合劑),孵育1~10min,激發(fā)波長(zhǎng)488nm測(cè)定熒光,即Fmin值。

      這個(gè)過(guò)程中的氯化鈣的作用如何, 請(qǐng)高人指點(diǎn), 謝謝。

      因?yàn)檎Q獫{中Ca2+濃度是1mM,細(xì)胞外液的Ca2+對(duì)細(xì)胞內(nèi)Ca2+有影響。加0.1%triton是增加膜通透性,使細(xì)胞外Ca2+進(jìn)入細(xì)胞內(nèi),作為zui大值。加EGTA是為了螯合Ca2+,作為zui小值.生理環(huán)境中細(xì)胞內(nèi)鈣離子濃度遠(yuǎn)低于細(xì)胞外液(大約1:10000),細(xì)胞膜對(duì)鈣的通透性變化對(duì)細(xì)胞內(nèi)鈣影響很大。

      4、流式與werstern的區(qū)別?

      知道一些,不足之處請(qǐng)大家補(bǔ)充:

      (1)Western 是檢測(cè)蛋白表達(dá)的金標(biāo)準(zhǔn),可用于檢測(cè)細(xì)胞多種類型的蛋白;流式細(xì)胞術(shù)的方法多用于檢測(cè)細(xì)胞膜蛋白,雖然也可通過(guò)Triton-X100給細(xì)胞打孔的方法來(lái)檢測(cè)胞內(nèi)蛋白,但對(duì)于分泌蛋白卻是無(wú)能為力的;(2)Western測(cè)蛋白含量對(duì)抗體的量需要很少,一般1:1000左右,而流式對(duì)抗體的需要量很大,一般1:50(很浪費(fèi)抗體);(3)采用Western方法檢測(cè)細(xì)胞蛋白含量的變化一般要有內(nèi)參,而流式一般要把每個(gè)樣品分為兩份,同時(shí)都做只加二抗(FITC標(biāo)記的)的對(duì)照,這樣平均到每個(gè)細(xì)胞的發(fā)光就不用內(nèi)參了;(4)就個(gè)人經(jīng)驗(yàn)而言,流式用多抗不好,單抗標(biāo)出來(lái)不錯(cuò)。

      不過(guò)流式的應(yīng)用原理主要還是抗原和抗體反應(yīng)和western、免疫組化沒有本質(zhì)差別,但是由于免疫組化和western都有酶催化底物的放大體系,因此,流式不適合檢測(cè)低表達(dá)的蛋白,低表達(dá)的還是采用western(尤其是化學(xué)發(fā)光底物更佳)和免疫組化更好。當(dāng)然,流式zui大的一個(gè)特點(diǎn)就是,可以定量(百分比),如果是高表達(dá)的用流式細(xì)胞儀非常有優(yōu)勢(shì)。

      5、FL1, FL2, FL3 的區(qū)別是什么?

      是指在不同位置測(cè)得的熒光?還是不同波長(zhǎng)的熒光?這3個(gè)參數(shù)到底測(cè)的是什么?有什么意義?

      你的理解是正確的,其實(shí)FL1, FL2, FL3 是指不同的熒光通道.舉個(gè)例子來(lái)說(shuō)吧.我們用FITC/PE雙標(biāo)記的細(xì)胞,在488nm的激光激發(fā)下,這兩種熒光染料分別發(fā)出波長(zhǎng)不同的綠色和橙色熒光,然后這發(fā)出的熒光再通過(guò)濾光片分開,對(duì)應(yīng)的是不同的波長(zhǎng)的濾光片,一般在fl1那的是530nm的濾光片,在FL2那的是575nm的濾光片,這樣就可以把在一起的熒光分開了。

      6、用于做Western 或ELISA的一抗可否用于流式細(xì)胞術(shù)?

      看你說(shuō)明書上是怎么說(shuō)的了,如果沒有說(shuō)就不可以做流式,需要另外買了。

      7、MFI 和 GFI 的意義?

      Geo Mean,叫做幾何均數(shù)(geometric mean),常用于等級(jí)資料和對(duì)數(shù)正態(tài)分布資料,和常用的算數(shù)均數(shù)(mean)的計(jì)算方法不同。%26ldquo; %total或者%gate的結(jié)果%26rdquo;代表的是百分率,即細(xì)胞占總體細(xì)胞或者是門內(nèi)細(xì)胞的百分比;用百分比作為統(tǒng)計(jì)指標(biāo),適用于熒光表達(dá)較強(qiáng)的指標(biāo)。我看到你的流式圖上,檢測(cè)樣本的熒光強(qiáng)度不是很強(qiáng),屬于弱表達(dá)的指標(biāo),若用百分率統(tǒng)計(jì),就是會(huì)失去一部分弱陽(yáng)性的數(shù)據(jù)。我建議可以用平均熒光強(qiáng)度(也就是mean值)作為統(tǒng)計(jì)指標(biāo),比較熒光強(qiáng)度的變化。

      8、流式技術(shù)中的APC,pure 標(biāo)記是什么意思呢?

      熒光物質(zhì)通常是指那些在受到一個(gè)波長(zhǎng)激發(fā)后,處于一個(gè)能量不穩(wěn)定的狀態(tài),能發(fā)射一個(gè)波長(zhǎng)比激發(fā)波長(zhǎng)長(zhǎng)的光的一類物質(zhì)。當(dāng)然熒光并不都是受激發(fā)后發(fā)射的,如一些生物可以發(fā)射熒光,如熒火蟲,發(fā)光細(xì)菌等,他們發(fā)出的光是通過(guò)體內(nèi)的酶促反應(yīng)而產(chǎn)生的,這個(gè)酶通常被稱為熒光素酶.EB是一種熒光物質(zhì),它在受到紫外線照射后可以發(fā)出一可見光,常用于DNA、RNA電泳中。

      APC

      英文全名:allophycocyanin;中文名:別藻青蛋白;zui大吸收峰:650nm,zui大發(fā)射熒光峰:660nm,適用于雙激光流式儀,可被600-640nm波長(zhǎng)的激光激發(fā)。

      PerCP

      英文全名:peridinin chlorophyll protein,中文名:多甲藻葉綠素蛋白;zui大激發(fā)波峰490nm,被488nm的氬離子激光激發(fā)后,發(fā)射光峰值約為677nm,與FITC、PE進(jìn)行多色熒光染色補(bǔ)償重疊較少,非特異性結(jié)合也較少。雖然較易使用,但量子產(chǎn)量不高,多用于檢測(cè)表達(dá)較高的抗原。

      9、怎樣用流式細(xì)胞儀來(lái)鑒定小鼠BMDC?

      檢測(cè)小鼠BMDC主要是從形態(tài)學(xué)和細(xì)胞表面分子兩方面來(lái)鑒定我做的時(shí)候就做了普通光鏡下形態(tài)、電鏡(掃描和透射),另外檢測(cè)了小鼠BMDC表面的共刺激分子如CD86 、CD11、CD80。還做了MHC II類分子的檢測(cè),還有MHCI類分子的檢測(cè),這些分子在DC表面都不是特異存在的,在巨噬細(xì)胞、淋巴細(xì)胞表面也有表達(dá),所以目前并沒有非常特異性的方法檢測(cè)你的細(xì)胞一定就是DC,但是從形態(tài)和表面分子的檢測(cè)結(jié)合來(lái)看,效果就比較好了.一般在幼稚的DC上述分子表達(dá)水平較低,DC成熟過(guò)程中,上述分子表達(dá)呈上調(diào)趨勢(shì),你可以在不同的培養(yǎng)時(shí)間分別檢測(cè)。

      10、請(qǐng)問(wèn)流式細(xì)胞術(shù)單抗直接熒光需要幾種對(duì)照?

      首先確認(rèn)你用的直標(biāo)抗體的熒光染料是什么,再確定該抗體的來(lái)源種屬,選擇相應(yīng)的同型對(duì)照。如:你現(xiàn)在想檢測(cè)小鼠淋巴細(xì)胞表面的CD4抗原, 熒光染料為FITC, 抗體來(lái)源為大鼠的IgG1亞型, 即Rat anti Mouse CD4-FITC (IgG1), 你所需要的同型對(duì)照就應(yīng)該是Rat IgG1-FITC, 一般的抗體說(shuō)明上都會(huì)寫清。

      11、6孔板的細(xì)胞量能否做流式呀?

      對(duì)于6孔板而言,每孔的表面積為10 cm2,依細(xì)胞種類不同在長(zhǎng)滿時(shí)達(dá)到的數(shù)量從5*10的5次方到5*10的6次方不等。6孔板是沒問(wèn)題的!甚至24孔板也可以正常做。不過(guò)用于調(diào)試儀器參數(shù)的正常細(xì)胞要多準(zhǔn)備一些。

      12、血液里的mononuclear cell(除外紅細(xì)胞,血小板和破碎的細(xì)胞碎片),能不能用細(xì)胞大小來(lái)gating,只看我關(guān)心的細(xì)胞?

      (1)紅細(xì)胞還是小一些,無(wú)法100%區(qū)分,但還是可用把大部分紅細(xì)胞gate掉。

      (2)溶血也很重要,如果你的紅細(xì)胞多的話。(我猜不少,如果用ficol的話)。可以用氯化銨溶液,如ACK(Lonzo),(3)CD45是所有白細(xì)胞都表達(dá)的,可以用來(lái)區(qū)分RBC vs. WBC13、細(xì)胞膜蛋白變化是用流氏檢測(cè)好,還是要做western?

      膜蛋白的提取,好像很費(fèi)功夫,提取的不好,western結(jié)果也就不可信。流式需要的抗體很少,流式能夠檢測(cè)陽(yáng)性表達(dá)細(xì)胞的比例,western能對(duì)總的表達(dá)定量,各有有缺點(diǎn)。

      14、FCM檢測(cè)表達(dá)結(jié)果到底是用百分比還是MFI?

      我作出是單峰,原本我覺得用MFI表示較好。但我做的2個(gè)蛋白很奇怪,一個(gè)表達(dá)率高,但MFI值低;另一個(gè)表達(dá)率低,但MFI值高。我又作了SYBR GREEN 定量PCR,發(fā)現(xiàn)mRNA 的表達(dá)基本與百分比相符,而與MFI值不太一致。

      個(gè)人認(rèn)為如果有明顯陰性細(xì)胞群和陽(yáng)性細(xì)胞群,應(yīng)計(jì)算百分比;無(wú)明顯分群,僅熒光強(qiáng)度發(fā)生變化的應(yīng)該用MFI。如果是整體峰移(或者叫單峰),那么根本不存在MFI之外的任何合理的指標(biāo),不管MFI跟其它指標(biāo)吻合度如何,這就是客觀數(shù)據(jù)、客觀事實(shí)。

      15、培養(yǎng)細(xì)胞的bcl-2及Bax蛋白的檢測(cè)?

      首先制成單細(xì)胞懸液,PBS洗滌后用胞內(nèi)染色試劑盒(很多公司都有,其實(shí)就是固定劑加增透/打孔劑)進(jìn)行處理,再進(jìn)行抗體孵育標(biāo)記染色,洗滌后上樣。

      16、流式檢測(cè)胞內(nèi)抗原時(shí)打孔液的配方?

      打孔液有很多種,方法也有很多。與你的實(shí)驗(yàn)方法相關(guān)。我用過(guò)酒精固定或Triton X-100(我做的都是培養(yǎng)的細(xì)胞):

      (1)70%的酒精固定24小時(shí)即可,不再需要再打孔。如在PI染色測(cè)細(xì)胞周期或凋亡。

      (2)Triton X-100是比較強(qiáng)烈的穿孔劑。0.1% Triton X-100/PBS(再加0.1%BSA) 是比較溫和一點(diǎn)。濃度可適當(dāng)提高。作用時(shí)間以幾分鐘為宜。這個(gè)時(shí)間必須要自己試。時(shí)間長(zhǎng)了細(xì)胞易破裂,短了則打孔不夠。如果你要染胞漿,則時(shí)間適當(dāng)短些,如果要染內(nèi)質(zhì)網(wǎng)或核內(nèi)等,由于要對(duì)兩層膜性結(jié)構(gòu)打孔,時(shí)間當(dāng)然會(huì)長(zhǎng)一些(3)可以試試0.1% saponin(皂素)

      17、標(biāo)本必須在抗體染色后30分內(nèi)檢測(cè)嗎?

      SOP是這么說(shuō)的:

      (1)Keep samples after staining covered with aluminum foil and at 4 0C (in the refrigerator) until they are run for flow analysis. The samples should be analyzed within 48 hours. Fluorescence loses its brightness if cells are not kept properly: not at 4 0C, or are exposed to light(2)If cells are not fixed with paraformaldehyde, keep the samples on ice and run them immediay after staining is accomplished因此,如果你沒有用PBS洗的話,可以用paraformaldehyde固定,放置48小時(shí)。洗了后應(yīng)該盡快檢測(cè)。如果做好不能及時(shí)檢測(cè),我們一般是加入等量的2%的多聚甲醛固定,4度冰箱避光貯存。一般過(guò)夜沒有問(wèn)題,第二天同樣PBS 2ml 洗滌細(xì)胞一次,上機(jī)檢測(cè)。

      18、如何分選原始紅細(xì)胞?

      CD71(轉(zhuǎn)鐵蛋白受體)--幼稚細(xì)胞的標(biāo)記

      CD235(GPA)--紅細(xì)胞的標(biāo)記(小鼠有Ter119)

      雙陽(yáng)性細(xì)胞即為幼稚紅細(xì)胞,但無(wú)法區(qū)分原始及中晚幼紅.

      19、請(qǐng)問(wèn)流式檢測(cè)膜蛋白表達(dá)的變化用多克隆抗體出結(jié)果的機(jī)會(huì)大嗎?

      流式的抗體和WB的抗體是不同的(有部分可以通用),多抗一般是大的變性蛋白為抗原制備的,而WB的中被檢測(cè)蛋白就是變性狀態(tài),所以很吻合,而流失中一般蛋白還是保持了天然構(gòu)象,所以產(chǎn)生的多抗可能不太好,而需要用很小特定的決定簇為抗原制備單克隆抗體。

      20、在下zui近作人外周血流式,作表面及其胞內(nèi)染色,試劑說(shuō)明書說(shuō)要先分離外周血單個(gè)核細(xì)胞再染色,我有時(shí)候分的紅細(xì)胞比較多,其他的方法試過(guò)了,都改進(jìn)的不好,我擔(dān)心紅細(xì)胞會(huì)有影響,想在分離出PBMC以后如果紅細(xì)胞比較多的話,就用紅細(xì)胞裂解液裂解一下,但是我有如下問(wèn)題,希望這樣做過(guò)的同志指點(diǎn)一下,感激不禁。

      (1)有人這樣在分離PBMC以后再裂解的嗎(我知道一般是在全血染色后再裂解紅細(xì)胞)?

      (2)這樣會(huì)影響流式檢測(cè)嗎?

      (3)用的裂解液配方是什么。

      (4)用法是什么{我是在如果PBMC分出來(lái)以后要是紅細(xì)胞比較多的時(shí)候使用,這樣要怎樣把分出的PBMC稀釋,加多少裂解液 裂解多長(zhǎng)時(shí)間,裂解后洗滌幾次等等}。

      我曾做骨髓液分離單個(gè)核細(xì)胞而后做流式,一般來(lái)說(shuō)用Ficoll分過(guò)之后即便還有紅細(xì)胞殘留,上流式也可通過(guò)%26ldquo;設(shè)門%26rdquo;根據(jù)細(xì)胞形態(tài)大小將紅細(xì)胞剔除。若紅細(xì)胞殘留太多,則可通過(guò)紅細(xì)胞裂解液進(jìn)一步去除之。我用的裂解液配方是:

      碳酸氫鉀(KHCO3) 1.0g

      氯化氨(NH4CL) 8.3g

      EDTA-Na2 0.037g 加雙H2O至1000ml,為工作液。

      配好后4度冰箱保存,使用時(shí)效果更好。我是在Ficoll分過(guò)之后用的,所以一般根據(jù)離心后EP管里細(xì)胞團(tuán)的大小加紅細(xì)胞裂解液,通常5ml骨髓液分離單個(gè)核細(xì)胞后得到的細(xì)胞再加500ul裂解液,震蕩混勻置2-5分鐘紅細(xì)胞就基本上裂解干凈了。洗滌次數(shù)看白細(xì)胞多少而定,因?yàn)橄吹拇螖?shù)越多,損失就越多。我一般洗一到兩次就OK了.做了很久沒發(fā)現(xiàn)這樣處理影響結(jié)果。有一點(diǎn),我是在這樣處理后才標(biāo)記抗體的,樓上的說(shuō)是標(biāo)記過(guò)才溶紅細(xì)胞,所以建議在溶的時(shí)候時(shí)間不宜過(guò)長(zhǎng),洗滌次數(shù)也不宜過(guò)多,以免將標(biāo)記上的單抗洗脫。

      21、請(qǐng)問(wèn)下表中流式細(xì)胞儀給出的平均值是什么意思,是怎樣得到的,有些文獻(xiàn)中提到%26ldquo;fluorescence per cell%26quot;,是下面的mean值嗎,還是要用mean值除以第1欄的細(xì)胞數(shù)events,才能得到fluorescence per cell ?

      mean 值就是每個(gè)細(xì)胞的平均熒光強(qiáng)度,不用再除細(xì)胞數(shù)。這只是個(gè)相對(duì)值,如果求jue對(duì)值,應(yīng)用已知熒光劑濃度值對(duì)應(yīng)儀器給出的mean值,做標(biāo)準(zhǔn)曲線。以后你得到的mean值,就可以根據(jù)這條標(biāo)準(zhǔn)曲線查出真正的熒光濃度值。

      22、流式中檢測(cè)細(xì)胞表面和細(xì)胞內(nèi)蛋白表達(dá)水平的抗體有何區(qū)別?

      抗體只是針對(duì)相應(yīng)抗原的,至于是針對(duì)胞內(nèi)還是胞膜對(duì)你檢測(cè)來(lái)說(shuō)并無(wú)明顯影響,你只需要查清楚到底是針對(duì)哪一個(gè)部位的抗原的,應(yīng)該是可以用同一種抗體進(jìn)行檢測(cè)的,在流式操作時(shí)只需注意:如果是針對(duì)胞內(nèi),則需要加破膜劑,讓抗體能和相應(yīng)抗原接觸,否則就不需要了。

      23、請(qǐng)教各位前輩:只要是熒光抗體久可以用于共聚焦顯微鏡嗎?

      一般情況下都是可以的。但有時(shí)候強(qiáng)度不夠,需要選擇熒光強(qiáng)度大的染料,比如Alexa系列的。

      24、流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞周期是否需要雞紅細(xì)胞作參照?

      不用,標(biāo)準(zhǔn)微球做完laser alignment(光路校正)就可以了。盡量把微球的各色CV值控制在1.5以內(nèi)。

      25、我現(xiàn)在要用間接法流式細(xì)胞術(shù),剛買了熒光二抗,是KPL的fluorescein-labeled affinity purified antibody to mouse IgG+IgM(H+L) produced in goat .說(shuō)明說(shuō)上提示要用TBS或是BSA或milk diluent/blocking solution液稀釋。稀釋至1:10~1:100。請(qǐng)問(wèn)BSA是不是小牛血清,要用多少濃度的。TBS液我沒有,還有可否用注射用水稀釋。

      BSA:牛血清白蛋白,濃度可以在一定范圍內(nèi)1%~5%,具體可參考其他抗體說(shuō)明書。

      TBS:Tris buffer saline。就是Tris的鹽溶液,很常規(guī)的溶液,配方:20mM Tris-HCl(ph8.0),150mM NaCl。

      你說(shuō)的注射用水應(yīng)該就是生理鹽水吧,這對(duì)抗體來(lái)說(shuō)是不利的,雖然在基礎(chǔ)條件很差的情況下會(huì)用這個(gè)溶液,但是還不如PBS溶液。既然是做流式,按照正規(guī)程序操作抗體,得到的結(jié)果也zui能反映真shi情況。

      26、流式細(xì)胞檢測(cè)中怎樣把對(duì)照和樣本的檢測(cè)結(jié)果放在一張圖中?

      分析獲取數(shù)據(jù)是分開進(jìn)行的,不可以混在一起上樣。首先通過(guò)陰性對(duì)照調(diào)節(jié)基本電壓,固定條件后進(jìn)行樣品檢測(cè),分別保存結(jié)果。利用流式軟件的multigraph中的overlap可以將陰性對(duì)照和樣品結(jié)果相應(yīng)圖進(jìn)行疊加,這只是獲取數(shù)據(jù)后對(duì)結(jié)果的組合和加工。

    魏經(jīng)理
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